DNAシーケンス 受託業務

ABI3130xl、3500xl DNAシーケンサーにより、プラスミドDNAまたはPCR産物の塩基配列を解析いたします。配列解析は、シーケンス反応済みのサンプル及び未反応のサンプルを受け付けています。結果がうまくいかない場合は、助言・サポートを行います。     ＊学外からは受付けておりません。

  解析に必要なもの

反応済みサンプルの場合（泳動のみ行う）
申込書 (配列解析のみ)	病院キャンパス及び箱崎キャンパスからと、それ以外のキャンパスからの申込みで、申込書が違います。ご自分のキャンパス用の申込書をダウンロードし、太枠内の必要事項をご記入ください。    病院キャンパス・箱崎キャンパス用（配列解析のみ）    上記キャンパス以外用（配列解析のみ）
サンプル（乾燥・遮光）	3130xl、3500xlシーケンサーを使用しておりますので、反応はBig Dye Terminator v3.1(v1.1) Cycle Sequencing Kit (Code No.4337455/No.4337450)を用いて行って下さい。サンプルは、エタノール沈殿又はカラムで精製したものを乾燥させた状態でご提出下さい（アルミホイルなどで遮光）。 ＜参考＞シーケンス反応、精製方法プロトコール
USBメモリ （必要な場合のみ）	データをUSBメモリ(所属、氏名、内線番号を明記して下さい）に入れてお渡しします。
未反応サンプルの場合（シークエンス反応・精製・泳動を行う）
申込書 （シーケンス反応と 配列解析）	ご自分のキャンパス用の申込書をダウンロードし、太枠内の必要事項をご記入ください。    病院キャンパス・箱崎キャンパス用（シーケンス反応と配列解析）    上記キャンパス以外用（シーケンス反応と配列解析）
サンプル（氷中）*	プラスミドの場合は0.1µg/µl前後でTotal0.5µg以上、PCR産物の場合は、100bpで2ng、500bpで10ng前後使用しますので、これに応じた量を十分量ご用意ください。 濃度は、吸光度測定（OD260）の後、ゲル電気泳動を行なって正確なDNA量を算出してください。
プライマー（氷中）*	1pmol/µLでご提出下さい。→1サンプル3.2pmol使用しますので、3.2µl（1pmol/µL）×サンプル数の2倍量以上多めにお願いします。
ゲル電気泳動の写真	DNA濃度が分かるマーカーと一緒に、サンプルの電気泳動を行ってください。 濃度が不明な場合は支援センターにご相談下さい。
USBメモリ （必要な場合のみ）	データをUSBメモリ(所属、氏名、内線番号を明記して下さい）に入れてお渡しします。

        ＊残った試料はお返しいたします。

  申込み方法

  データの受け渡し方法

波形生データ解析には、下記をご利用いただけます。
● Thermo Fisherの無料クラウドサービス（Windows、Mac対応）
    ・Thermo Fisher Connect

使用方法について：
https://www.thermofisher.com/jp/ja/home/cloud/all-analysis-modules.html
→サンガーシーケンシング
→「Thermo Fisher Connect 簡易操作ガイド　-キャピラリー電気泳動のアプリケーション-」（PDF） をお読みください。
なお、セキュリティについては、各自のご判断でお願いします。

● 無料ソフトのダウンロード（Windowsのみ）
     ・Thermo Fisher社： Applied Biosystems™ Sequence Scanner Software v2.0
     ・Technelysium社： Download Chromas 2.6.5

  費用

反応済みサンプル    1検体　300円

未反応サンプル       1検体　1,500円

月末締めで予算の振替処理をいたします。
部局等運営経費、科学研究費補助金、受託研究費、共同研究費、寄附金などのお支払いになります。

お問い合せ先 〒812-8582　福岡市東区馬出3-1-1 九州大学医学研究院　教育・研究支援センター（基礎A棟2階 ） Tel:092-642-6602（馬出地区内線:6602 ） Fax:092-642-6609 E-mail: